มุ่งเป้าไปที่ MGI High-Throughput Sequencing Platform Fast DNA Library Prep Kit

มุ่งเป้าไปที่ MGI High-Throughput Sequencing Platform Fast DNA Library Prep Kit

รายละเอียดสินค้า:

สถานที่กำเนิด: จีน
ชื่อแบรนด์: GDSBio
ได้รับการรับรอง: ISO9001, ISO13485
หมายเลขรุ่น: KM001-A, KM001-B

การชำระเงิน:

จำนวนสั่งซื้อขั้นต่ำ: 1 กล่อง
รายละเอียดการบรรจุ: บรรจุภัณฑ์ขนาดเล็กหรือจำหน่ายจำนวนมากหรือ OEM
เวลาการส่งมอบ: 8 วันทำงาน
เงื่อนไขการชำระเงิน: L/C, D/A, D/P, T/T, Western Union, MoneyGram
สามารถในการผลิต: 10,000 กล่อง/กล่องต่อวัน
ราคาถูกที่สุด ติดต่อ

ข้อมูลรายละเอียด

แมว. เลขที่: KM001-A, KM001-B ข้อมูลจำเพาะ: KM001-A/24 rxns; KM001-B/96 rxns
รูปร่าง: ของเหลวใส คลังสินค้า: ใช่
แพลตฟอร์มลำดับ: เอ็มจีไอ ประเภทตัวอย่าง: ดีเอ็นเอ
การพิมพ์โลโก้: ด้วยการพิมพ์โลโก้ แพ็คเกจการขนส่ง: การบรรจุ
อายุการเก็บรักษา: 12 เดือน สภาพการเก็บรักษา: -20°ซ
แสงสูง:

หลอดขนส่งไวรัสแบบใช้แล้วทิ้ง

,

หลอดขนส่งไวรัส VTM

,

หลอดทดลอง vtm พร้อม Swab

รายละเอียดสินค้า

Fast DNA Library Prep Kitสำหรับ MGI

[ชื่อผลิตภัณฑ์]

Fast DNA Library Prep Kit สำหรับ MGI

[แมว.No./Spec.]

KM001-A/24 rxns;KM001-B/96 rxns;กระสอบตัวอย่าง/ 6 rxns

[รายละเอียดสินค้า]

ชุดนี้มุ่งเป้าไปที่แพลตฟอร์มการหาลำดับปริมาณงานสูงของ MGI ให้รูปแบบการสร้างไลบรารี DNA ที่สะดวกและเป็นสากลในหลอดเดียวมันรวมการซ่อมแซมจุดสิ้นสุดและ A-Tailing เข้าไว้ในขั้นตอนเดียว และรีเอเจนต์จะผสมล่วงหน้าอย่างมาก ทำให้เวลาในการสร้างห้องสมุดสั้นลงอย่างมาก และลดข้อผิดพลาดที่เกิดจากขั้นตอนที่น่าเบื่อการเตรียมการขั้นสุดท้าย การต่อสายอะแด็ปเตอร์ การขยาย และการทำให้บริสุทธิ์ของ DNA สายคู่ที่แยกส่วนนั้นสามารถดำเนินการได้ภายในเวลาประมาณ 2 ชั่วโมงการหาปริมาณไลบรารีแบบสมบูรณ์สามารถทำได้ด้วยวิธี dsDNA fluorescent dye (เช่น Thermo Qubit Flex Fluorometer) หรือ PCR การหาปริมาณแบบสัมบูรณ์ หลังจากเจือจางไลบรารีให้มีความเข้มข้นที่เหมาะสม

[ประเภทตัวอย่าง]

แอปพลิเคชัน ประเภทตัวอย่าง ปริมาณที่แนะนำ
การหาลำดับจีโนมทั้งหมด จีโนมที่ซับซ้อนคุณภาพสูง 50ng-1μg
ลำดับการจับเป้าหมายของ exome ทั้งหมด จีโนมที่ซับซ้อนคุณภาพสูง 10ng-1μg
ลำดับการจับเป้าหมายของจีโนมทั้งหมด FFPE ดีเอ็นเอ ≥50ng
ลำดับการจับเป้าหมายของจีโนมทั้งหมด cfDNA/ctDNA ≥100pg
การหาลำดับจีโนมทั้งหมด จีโนมของจุลินทรีย์ 1ng-1μg
ชิป-Seq ชิปดีเอ็นเอ ≥100pg
ลำดับเป้าหมาย แอมปลิคอน ≥100pg

[สภาพการเก็บรักษาและอายุการเก็บรักษา]

รีเอเจนต์ทั้งหมดควรเก็บไว้ที่อุณหภูมิ -20°CLigation Buffer เป็นเรื่องปกติที่คริสตัลจะตกตะกอนที่อุณหภูมิต่ำ ควรปรับให้สมดุลกับอุณหภูมิห้องก่อนใช้งานสินค้ามีอายุ 12 เดือน

[ส่วนประกอบ]

ส่วนประกอบ 24 rxns 96 rxns
สิ้นสุดการซ่อมแซม & A-Tailing Mix 480 มล 4×480 ไมโครลิตร
DNA Ligase ที่รวดเร็ว 120 มล 2×240 ไมโครลิตร
บัฟเฟอร์ Ligation อย่างรวดเร็ว 600 มล 4×600 ไมโครลิตร
2 × HIFI Library PCR Master Mix 600 มล 4×600 ไมโครลิตร
ไพรเมอร์ผสมสำหรับ MGI* 120 มล 480 มล

* หากมีมากกว่าหนึ่งตัวอย่าง แนะนำให้ใช้ #KM002 และ #KM003 อะแด็ปเตอร์ไพรเมอร์ผสมชุดนี้มีชุดไพรเมอร์ ลำดับไพรเมอร์มีดังนี้:

5'-TGTGAGCCAAGGAGTTG-3'

5'-GAACGACATTGGCTACGA-3'

หมายเหตุ: เม็ดบีดสำหรับการเลือกที่แนะนำ: #NC1011 GDSPure DNA Selection Magbeads หรือเม็ดบีด AMPure XP

[หมายเหตุ]

1. เรามีชุดไพรเมอร์ Universal Adapter สองประเภท (#KM002 และ #KM003 ซื้อแยกต่างหาก) แต่ลูกค้ายังสามารถเลือกจากผู้ผลิตรายอื่นหรือสังเคราะห์ Adapter ของตนเองสำหรับแพลตฟอร์มการหาลำดับ MGIAdapter มากเกินไปจะนำไปสู่การสร้าง Adapter dimer และ Adapter ที่ไม่เพียงพอจะทำให้เอาต์พุตไลบรารีเหลือน้อยดังนั้นความเข้มข้นของ Adapter ที่เหมาะสมจะเป็นตัวกำหนดความเข้มข้นและคุณภาพของไลบรารีความเข้มข้นของอะแด็ปเตอร์ที่แนะนำสำหรับอินพุต DNA ในปริมาณต่างๆ แสดงไว้ในตารางต่อไปนี้:

ตารางที่ 1 ความเข้มข้นในการใช้งานที่แนะนำของอะแดปเตอร์

การป้อนข้อมูลดีเอ็นเอ ข้อแนะนำที่แนะนำสำหรับอแดปเตอร์ อะแดปเตอร์: ใส่อัตราส่วนโมล องศาการเจือจางอะแดปเตอร์ GDS*
1μg 10μM 10:1 ไม่มีการเจือจาง
500ng 10μM 20:1 ไม่มีการเจือจาง
250ng 10μM 40:1 ไม่มีการเจือจาง
100ng 7.5μM 100:1 3:4
50ng 5μM 200:1 1:2
25 ก 2.5μM 200:1 1:4
1 วัน 1μM 200:1 1:10

* แสดงเป็นอัตราส่วนปริมาตรของอะแดปเตอร์ต่อสารเจือจาง

2. เอนไซม์ที่ใช้ใน 2× HIFI Library PCR Master Mix คือ DNA polymerase ตระกูล B ซึ่งมีพอลิเมอเรส 5 '-3' และกิจกรรม exonuclease 3 '-5' แต่ไม่มีกิจกรรม exonuclease 5 '-3'มีความเที่ยงตรงสูงและเป็นเนื้อเดียวกัน และมีความสามารถในการสังเคราะห์ที่ยั่งยืนการควบคุมจำนวนรอบการขยายอย่างเข้มงวดมีความสำคัญอย่างยิ่งสำหรับเอาต์พุตของไลบรารีตารางต่อไปนี้แสดงจำนวนรอบการขยายสัญญาณที่แนะนำซึ่งสอดคล้องกับปริมาณ DNA ที่ป้อนเข้าที่แตกต่างกัน:

ตารางที่ 2 จำนวนรอบการขยายสัญญาณที่แนะนำซึ่งสอดคล้องกับอินพุตตัวอย่างต่างๆ

ใส่ดีเอ็นเอ จำนวนรอบการขยายสัญญาณที่แนะนำ
ห้องสมุด 100ng ห้องสมุด1μg
1μg 0 2-5
500ng 0 2-5
250ng 1-3 5-7
100ng 2-4 6-8
50ng 4-6 8-10
25 ก 5-7 9-12
10ng 7-9 11-13
5 น 9-11 13-14
2.5ng 10-12 14-16
1 วัน 11-13 15-17

หมายเหตุ: 1. ตารางด้านบนแสดงผลการทดสอบโดยใช้ DNA มาตรฐาน 150bp ซึ่งใช้สำหรับการอ้างอิงเท่านั้น

2. หากใช้ตัวเชื่อมต่อที่ไม่สมบูรณ์ ควรขยายจำนวนรอบขั้นต่ำ (1-3) เพื่อให้ได้ไลบรารีที่สมบูรณ์

3. หากคุณภาพของ DNA ที่ป้อนไม่ดี หรือมีการเลือกขนาดในระหว่างการก่อสร้างห้องสมุด ควรเพิ่มจำนวนรอบการขยายสัญญาณอย่างเหมาะสม

[กระบวนการสร้างห้องสมุดมาตรฐาน]

จบการซ่อม

หมายเหตุ: หาก DNA ที่แยกส่วนเกิน 45 ไมโครลิตรก่อนขั้นตอนนี้ หรือบัฟเฟอร์เข้ากันไม่ได้กับบัฟเฟอร์การซ่อมแซมปลายทาง ควรทำการทำให้บริสุทธิ์ด้วยเม็ดแม่เหล็กก่อน

1. เตรียมปฏิกิริยาต่อไปนี้ในหลอด PCR ขนาด 200 ไมโครลิตร:

รีเอเจนต์ ปริมาณ
ดีเอ็นเอที่กระจัดกระจาย ตัวแปร
สิ้นสุดการซ่อมแซม & A-Tailing Mix 20 มล
วว2 ถึง 65 ไมโครลิตร

2. หมุนวนเบา ๆ และหมุนสั้น ๆ เพื่อให้ส่วนผสมเข้ากันดี หมุนเหวี่ยงสั้น ๆ และรวบรวมของเหลวทั้งหมดไปที่ด้านล่างของหลอด

3. ทำปฏิกิริยาต่อไปนี้ในวงจรความร้อน:

อุณหภูมิ เวลา
20°ซ 15 นาที
65°ซ 15 นาที
4°ซ

อแดปเตอร์ แอลปฏิกิริยา

1. ดำเนินการปฏิกิริยา ligation โดยเร็วที่สุดหลังจากการเตรียมการสิ้นสุด

2. เจือจางอะแดปเตอร์ตามตารางที่ 1

3. เตรียมระบบปฏิกิริยาต่อไปนี้:

รีเอเจนต์ ปริมาณ
สิ้นสุดการซ่อมและผลิตภัณฑ์ A-Tailing 65 มล
บัฟเฟอร์ Ligation อย่างรวดเร็ว 25 มล
DNA Ligase ที่รวดเร็ว 5 ไมโครลิตร
อะแดปเตอร์ X สำหรับ MGI 5 ไมโครลิตร
ทั้งหมด 100 มล

4. หมุนวนเบา ๆ และหมุนสั้น ๆ เพื่อให้ส่วนผสมเข้ากันดี หมุนเหวี่ยงสั้น ๆ แล้วรวบรวมของเหลวทั้งหมดไปที่ด้านล่างของหลอด

5. ทำปฏิกิริยาต่อไปนี้ในวงจรความร้อน:

อุณหภูมิ เวลา
20°ซ 15 นาที
4°ซ

ที่แนะนำทางออกสำหรับการล้าง PCR/การเลือกขนาด(ควรปรับปริมาตรเม็ดแม่เหล็กเฉพาะตามตัวอย่างจริงขนาด)

1. เตรียมผลิตภัณฑ์ ligation 100 ไมโครลิตรลงในหลอดปั่นแยกที่เหมาะสม

2. เติมเม็ดแม่เหล็กสำหรับการเลือก DNA ที่แขวนลอยใหม่ 100 ไมโครลิตรลงในตัวอย่างค่อยๆ เป่าด้วยปิเปต 10 ครั้ง (หรือกระแสน้ำวนเป็นเวลา 30 วินาที)บ่มตัวอย่างเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง

3. วางท่อบนชั้นวางแม่เหล็กที่เหมาะสมเพื่อแยกเม็ดบีดออกจากส่วนเหนือตะกอนเมื่อสารละลายใสแล้ว ให้ค่อยๆ ถอดและทิ้งส่วนเหนือตะกอนด้วยปิเปต (อย่าทิ้งเม็ดบีดส์)

4. เติมเอทานอล 80% ที่เตรียมขึ้นใหม่ 200 ไมโครลิตรลงในหลอดในขณะที่อยู่ในชั้นวางแม่เหล็กบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 วินาที จากนั้นนำส่วนเหนือตะกอนออกอย่างระมัดระวังและทิ้งไป (อย่ารบกวนเม็ดบีดส์)

5. ทำซ้ำขั้นตอนที่ 4 หนึ่งครั้งสำหรับการซักทั้งหมดสองครั้ง

หมายเหตุ: ตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้เอาของเหลวที่มองเห็นออกทั้งหมดหลังจากการซักครั้งที่สอง

6. ผึ่งลมให้เม็ดแม่เหล็กแห้งจนพื้นผิวของเม็ดแม่เหล็กไม่มีความมันเงาชัดเจน ขณะที่หลอดอยู่บนชั้นวางแม่เหล็กโดยเปิดฝาไว้

หมายเหตุ: อย่าทำให้เม็ดบีดแห้งเกินไป อาจส่งผลให้การฟื้นตัวของ DNA ลดลงเมื่อลูกปัดเริ่มแตกแสดงว่าแห้งเกินไป

7. ถอดท่อออกจากชั้นวางแม่เหล็กเติมบัฟเฟอร์การชะ 22 ไมโครลิตร (10 มิลลิโมลาร์ Tris-HCl, pH8.0-8.5) ลงในหลอดผสมให้เข้ากันโดยการปิเปตขึ้นและลงอย่างน้อย 10 ครั้งหรือบนเครื่องผสมน้ำวนเป็นเวลา 30 วินาทีบ่มเป็นเวลา 3-5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง

8. วางท่อบนชั้นวางแม่เหล็กหลังจากผ่านไป 5 นาที (หรือเมื่อสารละลายใส) ให้ย้ายสารลอยเหนือตะกอน 20 ไมโครลิตรไปยังหลอดใหม่การเลือกเสร็จสิ้น และสามารถใช้ DNA ที่เลือกสำหรับการทดลองในภายหลังหรือเก็บไว้ที่อุณหภูมิ -20°C เป็นเวลานาน

การขยายห้องสมุด

1. เตรียมปฏิกิริยาต่อไปนี้ในหลอด PCR ขนาด 200 ไมโครลิตร:

รีเอเจนต์ ปริมาณ
ผลิตภัณฑ์ Ligation หลังจากการล้างข้อมูลหรือการเลือกขนาด 20 มล
2 × HIFI Library PCR Master Mix 25 มล
ไพรเมอร์ผสมสำหรับ MGI 5 ไมโครลิตร
ทั้งหมด 50 มล

2. หมุนวนเบา ๆ และหมุนสั้น ๆ เพื่อให้ส่วนผสมเข้ากันดี หมุนเหวี่ยงสั้น ๆ และรวบรวมของเหลวทั้งหมดไปที่ด้านล่างของหลอด

3. ทำปฏิกิริยาต่อไปนี้ในวงจรความร้อน:

อุณหภูมิ เวลา หมายเลขไซเคิล
95°ซ 3 นาที 1
98°ซ 20 วินาที

 

เลือกจำนวนรอบที่เหมาะสมตามตารางที่ 2

60°ซ 15 วินาที
72°ซ 30 วินาที
72°ซ 5 นาที 1
4°ซ -

ที่แนะนำทางออกสำหรับการล้าง PCR/การเลือกขนาด(ควรปรับปริมาตรเม็ดแม่เหล็กเฉพาะตามตัวอย่างจริงขนาด)

1. เตรียมผลิตภัณฑ์ ligation 50 ไมโครลิตรลงในหลอดปั่นแยกที่เหมาะสม

2. เติมเม็ดแม่เหล็กสำหรับการเลือก DNA ที่แขวนลอยใหม่ 45 ไมโครลิตรลงในตัวอย่างค่อยๆ เป่าด้วยปิเปต 10 ครั้ง (หรือกระแสน้ำวนเป็นเวลา 30 วินาที)บ่มตัวอย่างเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง

3. วางท่อบนชั้นวางแม่เหล็กที่เหมาะสมเพื่อแยกเม็ดบีดออกจากส่วนเหนือตะกอนเมื่อสารละลายใสแล้ว ให้ค่อยๆ ถอดและทิ้งส่วนเหนือตะกอนด้วยปิเปต (อย่าทิ้งเม็ดบีดส์)

4. เติมเอทานอล 80% ที่เตรียมขึ้นใหม่ 200 ไมโครลิตรลงในหลอดในขณะที่อยู่ในชั้นวางแม่เหล็กบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 วินาที จากนั้นนำส่วนเหนือตะกอนออกอย่างระมัดระวังและทิ้งไป (อย่ารบกวนเม็ดบีดส์)

5. ทำซ้ำขั้นตอนที่ 4 หนึ่งครั้งสำหรับการซักทั้งหมดสองครั้ง

หมายเหตุ: ตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้เอาของเหลวที่มองเห็นออกทั้งหมดหลังจากการซักครั้งที่สอง

6. ผึ่งลมให้เม็ดแม่เหล็กแห้งจนพื้นผิวของเม็ดแม่เหล็กไม่มีความมันเงาชัดเจน ขณะที่หลอดอยู่บนชั้นวางแม่เหล็กโดยเปิดฝาไว้

หมายเหตุ: อย่าทำให้เม็ดบีดแห้งเกินไป อาจส่งผลให้การฟื้นตัวของ DNA ลดลงเมื่อลูกปัดเริ่มแตกแสดงว่าแห้งเกินไป

7. ถอดท่อออกจากชั้นวางแม่เหล็กเติมบัฟเฟอร์การชะ 22 ไมโครลิตร (10 มิลลิโมลาร์ Tris-HCl, pH8.0-8.5) ลงในหลอดผสมให้เข้ากันโดยการปิเปตขึ้นและลงอย่างน้อย 10 ครั้งหรือบนเครื่องผสมน้ำวนเป็นเวลา 30 วินาทีบ่มเป็นเวลา 3-5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง

8. วางท่อบนชั้นวางแม่เหล็กหลังจากผ่านไป 5 นาที (หรือเมื่อสารละลายใส) ให้ย้ายสารลอยเหนือตะกอน 20 ไมโครลิตรไปยังหลอดใหม่การคัดเลือกเสร็จสิ้นแล้ว และ DNA ที่เลือกสามารถเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 2-8°C เป็นเวลา 1-2 สัปดาห์ หรือเก็บไว้ที่อุณหภูมิ -20°C เป็นเวลานาน

[ภาคผนวก]รูปแบบที่แนะนำสำหรับการเลือกสองด้าน

หากจำเป็นต้องเลือกแบบสองรอบ เรามีรูปแบบต่อไปนี้เพื่อเลือกปริมาตรเม็ดแม่เหล็กที่เหมาะสมตามขนาดไลบรารีที่คาดไว้สามารถเลือกขนาดได้ก่อนสิ้นสุดการซ่อมหรือหลังการขยายเสียงการเลือกสองรอบหรือมากกว่าสองรอบจะลดผลตอบแทนของไลบรารีลงอย่างมาก

เติมปริมาตรไลบรารีในตารางด้านล่างเป็น 100 μlเลือกปริมาตรของเม็ดแม่เหล็กในสองรอบตามขนาดไลบรารีที่ต้องการและดำเนินการเลือกตามคำแนะนำต่อไปนี้

ตารางที่ 3 จำนวนเม็ดแม่เหล็กที่แนะนำสำหรับการเลือกแบบสองรอบ

ขนาดไลบรารีที่คาดหวัง 150bp 200bp 250bp 300bp 400bp 500bp 600bp 700bp
ปริมาณลูกปัด(ไมโครลิตร) รอบที่ 1 100 90 80 70 60 55 50 45
รอบที่ 2 30 20 20 20 20 15 15 15

1. เติมปริมาตรของไลบรารีเป็น 100 ไมโครลิตรในหลอด PCR ขนาด 200 ไมโครลิตร และระบุเป็น A เติมเม็ดแม่เหล็กตามตารางที่ 3 (รอบที่ 1) ตามตารางที่ 1 ลงในหลอด A เป่าปิเปตเบาๆ เป็นเวลา 30 วินาทีบ่มตัวอย่างเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง

2. วางท่อ A บนชั้นวางแม่เหล็กที่เหมาะสมเพื่อแยกเม็ดบีดออกจากส่วนเหนือตะกอนเมื่อสารละลายใสแล้ว ให้นำส่วนเหนือตะกอนออกอย่างระมัดระวังในหลอดใหม่และติดป้ายว่า B. ทิ้งเม็ดบีดส์

3. เพิ่มปริมาณเม็ดแม่เหล็กตามตารางที่ 3 (รอบที่ 2) ลงในหลอด B เป่าปิเปตเบาๆ เป็นเวลา 30 วินาทีบ่มตัวอย่างเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิห้องวางท่อ B บนชั้นวางแม่เหล็กเมื่อสารละลายใสแล้ว ให้ค่อยๆ ขจัดและทิ้งส่วนเหนือตะกอนอย่างระมัดระวัง

4. เติมเอทานอล 80% ที่เตรียมขึ้นใหม่ 200 ไมโครลิตรลงในหลอด B ในขณะที่อยู่ในชั้นวางแม่เหล็กบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 วินาที จากนั้นนำส่วนเหนือตะกอนออกอย่างระมัดระวังและทิ้งไป (อย่ารบกวนเม็ดบีดส์)

5. ทำซ้ำขั้นตอนที่ 6 หนึ่งครั้งรวมการซักสองครั้ง

หมายเหตุ: ตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้เอาของเหลวที่มองเห็นออกทั้งหมดหลังจากการซักครั้งที่สอง

6. ผึ่งลมให้เม็ดแม่เหล็กแห้งจนพื้นผิวของเม็ดแม่เหล็กไม่มีความมันเงาชัดเจน ขณะที่หลอด B อยู่บนชั้นวางแม่เหล็กโดยเปิดฝาไว้

หมายเหตุ: อย่าทำให้เม็ดบีดแห้งเกินไป อาจส่งผลให้การฟื้นตัวของ DNA ลดลงเมื่อลูกปัดเริ่มแตกแสดงว่าแห้งเกินไป

7. ถอดท่อ B ออกจากชั้นวางแม่เหล็กเติมบัฟเฟอร์การชะ 22 ไมโครลิตรลงในหลอดผสมให้เข้ากันโดยการปิเปตขึ้นและลงอย่างน้อย 10 ครั้งหรือบนเครื่องผสมน้ำวนเป็นเวลา 30 วินาทีบ่มเป็นเวลา 3-5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง

หมายเหตุ: หากไม่ดำเนินการจับเป้าหมาย ให้เพิ่มบัฟเฟอร์การชะ (10mM Tris-HCl, ph 8.0-8.5) สำหรับการชะมิฉะนั้นควรใช้น้ำบริสุทธิ์พิเศษที่ผ่านการฆ่าเชื้อเพื่อชะล้าง

  • วางท่อ B บนชั้นวางแม่เหล็กถ่ายโอนสารเหนือตะกอน 20 ไมโครลิตรไปยังหลอดใหม่

 

เพื่อใช้ในการวิจัยเท่านั้น

มุ่งเป้าไปที่ MGI High-Throughput Sequencing Platform Fast DNA Library Prep Kit 0

 

GDSBio เป็นองค์กรเทคโนโลยีขั้นสูงที่มุ่งเน้นไปที่การวิจัยและพัฒนา การผลิตและการขายผลิตภัณฑ์ด้านชีววิทยาศาสตร์คุณภาพสูงบริษัทมีสายผลิตภัณฑ์ที่สมบูรณ์ โดยมีเทคโนโลยี PCR เป็นแกนหลัก โดยเน้นไปที่ PCR ทั่วไป, PCR เชิงปริมาณเรืองแสง, การจัดเก็บ NGS, อิเล็กโทรโฟรีซิสของกรดนิวคลีอิก และเทคโนโลยีอณูชีววิทยาอื่นๆ และได้พัฒนารีเอเจนต์สำหรับการวิจัยระดับโมเลกุล วัตถุดิบการวินิจฉัยระดับโมเลกุลในหลอดทดลอง รีเอเจนต์การสกัดและตรวจจับกรดนิวคลีอิกและผลิตภัณฑ์อื่นๆ

มุ่งเป้าไปที่ MGI High-Throughput Sequencing Platform Fast DNA Library Prep Kit 1มุ่งเป้าไปที่ MGI High-Throughput Sequencing Platform Fast DNA Library Prep Kit 2

 

ต้องการทราบรายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับผลิตภัณฑ์นี้
ฉันสนใจ มุ่งเป้าไปที่ MGI High-Throughput Sequencing Platform Fast DNA Library Prep Kit คุณช่วยส่งรายละเอียดเพิ่มเติมเช่นประเภทขนาดปริมาณวัสดุ ฯลฯ ให้ฉันได้ไหม
ขอบคุณ!